DB22/T 2963-2019 湖库水生生物资源调查技术规程

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DB22/T 2963-2019 湖库水生生物资源调查技术规程

用三角拖网、手抄网等在沿岸带和亚沿岸带的不同生境中采集定性样品

7.3样品的固定和保存

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7.3.1软体动物宜用75%乙醇溶液保存,4d5d后再换一次乙醇溶液,或用5%甲醛溶液固定,或去 内脏后保存空壳。 7.3.2水生昆虫可用5%乙醇溶液固定,5h~6h后移入75%乙醇溶液中保存。 7.3.3水栖寡毛类应先放入培养皿中,加少量清水,并缓缓滴加数滴75%乙醇溶液将虫体麻醉,待其 完全舒展伸直后,再用5%甲醛溶液固定,75%乙醇溶液保存。

DB37/T 3222-2018 智能化交通管理设施防雷技术规范7.4.1.1软体动物须鉴定到种

7.4.1.2水生昆虫(除摇蚊科幼虫)至少鉴定到科;

鉴定水生寡毛类和摇蚊科幼虫时,应制片在解镜或低倍显微镜下进行,用甘油做透明剂。如 型底栖动物保留制片,可将保存在75%乙醇溶液中的标本取出,用85%、90%、95%、100%乙醇进行 水处理,每15min更换1次,直至将标本水分脱尽,再移入二甲苯溶液中透明,然后将标本 玻片上,用树胶或Puris胶封片

每个采样点所采得的底栖动物应按不同种类准确地统计个体数。在标本已有损坏的情况下,只 部,不统计零散的腹部、附肢等,

8.2.1.1测量或估计各类大型水生植物带区的面积。 8.2.1.2选择密集区、一般区和稀疏区布设采样断面和点。 8.2.1.3采样断面应平行排列,亦可为“之”字形。 8.2.1.4采样断面的间距一般为50m~100m。 8.2.1.5采样断面上采样点的间距为100m~200m。 8.2.1.6没有大型水生植物分布的区域不设采样点。

8.2.1.1测量或估计各类大型水生植物带区的面积。

8.2.1.1测量或估计各类大型水生植物带区的面积。 8.2.1.2选择密集区、一般区和稀疏区布设采样断面和点。 8.2.1.3采样断面应平行排列,亦可为“之”字形。 8.2.1.4采样断面的间距一般为50m~100m。 8.2.1.5采样断面上采样点的间距为100m~200m。 8.2.1.6没有大型水生植物分布的区域不设采样点。

8. 2. 2 定量采样

水植物用1m采样方框采集。采集时,将方框内

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8.2.2.2沉水植物、浮叶植物和漂浮植物,用采样面积为0.25㎡的水草定量夹采集,采集时,将水 草夹张开,插入水底,然后用力加紧,把方框内的全部植物连根带泥夹起,冲洗除去淤泥,将网内水草 洗净装入编有号码的水草袋内。 8.2.2.3除去污泥等杂质,装入样品袋内,沉水植物可放入盛水的容器中。 8.2.2.4每个采样点采集两个平行样品。

8.2.3.1挺水植物用手采集。【 8.2.3.2浮叶植物和沉水植物用水草采集粑采集。 8.2.3.3漂浮植物直接用手或带柄手抄网采集。 8.2.3.4样品宜在开花和(或)果实发育的生长高峰季节采集,采集的样品应完整(包括根、茎、叶、 花、果)

性样品新鲜时进行鉴定。所有标本应鉴定到种

A.1浮游植物调查器具

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水深小于10m的水体可用玻璃瓶采水器,深水应用颠倒式采水器或有机玻璃采水器,规本

A. 1.2浮游生物网

A.1.2.113号生物网

圆锥形,孔径0.112mm,筛绢缝制成

圆锥形,孔径0.112mm,筛绢缝制成。

A.1.2.225号生物网

圆锥形,孔径0.064mm,筛绢缝制成

1000mL圆筒形玻璃沉淀器或1000mL分液漏

A. 1. 6 乳胶管或U形玻璃管

A. 1. 7 洗耳球

A. 1. 8 刻度吸管

0. 1 mL、1. 0 mLe

0.1mL(10行×10行,共100格)

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A. 1. 11显微镜

A.2浮游动物调查器具

采水器(1000mL,5000mL),13号浮游生物网(孔径0.112mm),水样瓶(1000mL,带 mL或50mL)。

沉淀器(1000mL),刻度吸管(1.0mL,5.0mL),计数框(0.1mL,1.0mL,5.0mL 镜,解剖镜,盖玻片

A.3底栖动物调查器具

A. 3. 1 采样工具

带网夹泥器(开口面积1/6m),三角拖网(开口面积1/6㎡),改良彼得生采泥器(开口 面积1/16m或1/20m),手抄网,普通温度计,深水温度计,酸度计,40目(孔径0.635mm) 60目(孔径0.423mm)的分样筛,塑料桶或盆,塑料袋,样品瓶(30mL~50mL,250mL广口瓶), 培养皿,白色解剖盘,吸管,小镊子,解剖针等。

解镜,显微镜,载玻片,盖玻片等。

盘天平,扭力天平,盘称,电子天平(精度0.0

A.4水生生物调查器具

刀片或硬刷,大镊子,小镊子,30mL~50mL玻璃或聚乙烯瓶,显微镜,解剖镜,载玻片,装样用 塑胶桶等。

A.5水生植物调查器具

A. 5. 1采样工具

A.5.1.1水草定量夹

口面积0.25m,网袋长95cm,网孔3.3cm×3

A.5.1.2采样方框

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1m(边长1m)和0.25m(边长0.5m)

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本标公 附录B (规范性附录) 根据透明度确定水样浓缩体积

(规范性附录) 根据透明度确定水样浓缩体积 表B. 根据透明度确定水样浓缩后的体积

表B.1根据透明度确定水样浓缩后的体积

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计数前需先核准浓缩沉淀后定量瓶中水样的实际体积,可加纯水使其成30mL、50mL、100mL等整 量。然后将定量样品充分摇匀,迅速吸出0.1mL置于0.1mL计数框内(面积20mm×20mm)。盖上盖玻 寸后,在高倍镜下选择3行~5行逐行计数,数量少时可全片计数, 1L水样中的浮游植物个数(密度)可用下列公式计算:

N一一1L水样中浮游生物的数量,个/L N一一计数框总格数; N—一计数过的方格数; V一一1L水样经浓缩后的体积,mL; V一计数框容积,mL; 数 Pn一一计数的浮游植物个数。

A一一1L水样中浮游生物的数量, L N一一计数框总格数; N一一计数过的方格数; V一一1L水样经浓缩后的体积,mL; V一一计数框容积,mL; Pn—一计数的浮游植物个数

首先应用台微尺测量所用显微镜在一定放大倍数下的视野直径,计算出面积。计数的视野应均匀分 布在计数框内,每片计数视野数可按浮游植物的多少而酌情增减,一般为50个~300个,依浮游植物 数确定计算视野数见表B.1。

浮游植物数确定计算视野数

1L水样中浮游植物的个数(密度)可用下列公式计算:

1L水样中浮游植物的个数(密度)可用下列公式计算:

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首先应用台微尺测量所用显微镜在 定放大借数 布在计数框内,每片计数视野数可按浮游植物的多少而酌情增减,一般为50个~300个,依浮游植物 数确定计算视野数见表C.1。

表C.1浮游植物数确定计算视野数

1L水样中浮游植物的个数(密度)可用下列公式计算:

部使用 N一一1L水样中浮游生物的数量,个/L; 不得翻印 C一一计算框面积,mm F一一视野面积,mm F一一每片计数过的视野数; V一一1L水样经浓缩后的体积,mL; V一一计数框容积,mL; P一一计数的浮游植物个数。

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采样前,先用塞氏盘测量水体的透明度,再按照透明度的0、0.5、1、2、3、4倍分层测定水下光 照强度,然后分层采集水样,挂到相应层次培养。将导管插到样品瓶底部,灌满瓶并溢出2~3倍体积 的水,以保证所有样品瓶中的溶解氧与所采水样的溶解氧完全一致。灌瓶完毕,将瓶盖塞好,立即对其 中一个玻瓶进行溶解氧的固定,这个瓶就代表初始瓶,另外2个玻瓶,做黑白瓶用,挂在原采水处曦 光24h。曝光结束后对黑白瓶进行溶解氧的固定。

曝光结束,取出黑白瓶,立即加入 、MnSO4与碱性碘化钾进行溶解氧固定,固定摇匀后放入黑暗处带 回室内分析。如果白瓶内产生大的气泡,应将玻瓶微微倾斜,将气泡置于瓶肩处,小心打开瓶塞加入固 定试剂,盖好瓶塞摇匀。注意玻瓶要加好封口水

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E3底栖动物调查表 采样日期:

E.4大型水生动物调查表

E4/大型水生植物调查表

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吸出0.1mL样品,置于0.1mL计数框内,盖上盖玻片,在10×20倍显微镜下全片计数。每瓶样 品计数两片,取其平均值

吸出1mL样品,置于1mL计数框内,在10×10倍显微镜下全片计数。每瓶样品计数两片,取其 平均值。

用5mL计数框将样品分若干次全部计数。如样品中个体数量太多,可将样品稀释50mL或 每瓶样品计数两片,取其平均值

如样品中个体数量不多,则和枝角类、桡足类一样全部计数;如数量很多,可把过滤样品稀释, 匀后取其中部分计数,计数3片~5片取其平均值。也可在轮虫样品中同轮虫一起计数, 计算公式

单位体积浮游动物的数量按下式计算

内部使用 式中: N一一1L水样中浮游动物的数量,个/L; V一采样的体积,L; V一一样品浓缩后的体积,mL; 不个 V一一计数样品体积,mL; n一一计数所获得的个体数,个。

式中: N一一1L水样中浮游动物的数量,个/L; V一一采样的体积,L; V一一样品浓缩后的体积,mL; V一一计数样品体积,mL; 一一计数所获得的个体数,个。

F.6.1计数前,充分摇匀样品,吸出迅速、准确。盖上盖玻片后,计数框内无气泡,无水样溢出。 F.6.2每瓶样品计数两片取其平均值,每片结果与平均数之差不大于土15%,否则必须计数第三片, 直至三片平均数与相近两数之差不超过均数的15%为止,这两个相近值的平均数即可视为计算结果。 F.6.3浮游植物计数单位用细胞个数表示。对不易用细胞数表示的群体或丝状体,可求出平均细胞数, 浮游动物计数单位用个数表示。 F.6.4某些个体一部分在视野中,另一部分在视野外,这时可规定只计数上半部分或只计数下半部分。

TAF-WG4-AS0016-V1.0.0:2018 移动智能终端安全能力测试方法.pdfDB22/T29632019

本标 附录G (规范性附录) 高等植物标本制作

附录G (规范性附录) 高等植物标本制作

.1.1在采集到的定性样品中,选择较完整的植物体,剪除枯枝叶及多余部分,用平头镊子将枝、叶、 花各部分展开,整齐自然地置于吸水纸上。如果叶有明显的背腹差异,应把部分叶片翻转使其背面向上。 枝条较长者要适当折转后铺放。有些粗厚的果实或地下茎,可开压放或摘除后另行处理。个体较大的 直物,可选择具有分类特性的部位进行压制。对枝叶纤细、质地柔软的植物,应将单株植物体放入水中, 整形后依其自然形态用玻璃板或白铁板轻轻托出水面,滴去积水放吸水纸上。 G.1.2在标本上面盖一层纱布和2层~3层吸水纸,最后将若干夹有标本的吸水纸叠放一起,置标 本夹(上下两片木制夹板)中,用绳捆紧加速定形和吸水。前3天应每天换纸和纱布2次,其后每天 1次,约一周后可完全干燥。干燥成形的标本取出后,夹在干纸中间或用纸条粘在卡片纸上。

G.2.1质地柔软的水生植物(如丝状藻),不宜制成蜡叶标本,则用浸制液浸泡。浸制时间视叶色变化 而定,一般几天后叶片由绿变褐,再由褐变绿时将标本取出,置5%甲醛溶液或70%的乙醇溶液中保存。 如标本过分柔软,可用线将其缚于玻璃棒或玻璃板上。 G.2.2制成的标本要及时贴上标签,注明采集日期、地点、采集者,并留下名称和分类地位栏待鉴定 后填写。

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一般按种类称重。称重前,洗净,除去根、枯死的枝叶及其他杂质,放干燥通风处阴干。用盘秤或 托盘天平称重。要求在采样当天完成。

称取子样品(不得少于样品量的10%),置于105℃鼓风牛燥箱申十燥48h或直到恒重,取出 其干重。 按下式进行计算:

DB37/T 2907-2019 运动场地合成材料面层 维护保养指南MM M: (H. I M

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